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宠物小鼠和大鼠

完整评审: 5月 2026 作者:Jennifer Frohlich, VMD, DACLAM, Animal Care Program, UC San Diego
上次更新: 5月 2026
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大鼠比小鼠更常作为宠物饲养。两种动物也广泛用于科研。尽管目前已积累了大量关于野生及实验用大鼠和小鼠的资料,但其中涉及宠物小鼠和大鼠的内容却相对较少。

宠物小鼠和大鼠疾病的发生率及疾病谱与实验动物存在显著差异。宠物小鼠和大鼠的诊断与治疗侧重于家庭饲养个体的评估与医疗,而非实验动物群体的健康管理。

小鼠和大鼠最常见的问题包括皮肤病、呼吸道感染和肿瘤。

小鼠和大鼠的生物学

雄性大鼠于 6~10 周龄达到性成熟;雌性大鼠于 8~12 周龄达到性成熟。雌、雄大鼠的繁殖期均为 9~12 个月。雌性大鼠发情周期为 4~5 天,发情期持续 10~20 小时。每次排卵约 10~20 枚。妊娠期为 21~23 天;不育交配所致假妊娠持续约 12 天。大鼠平均每胎产仔数为 8~18 只。约 21 日龄断奶。

雄性和雌性小鼠均于 6~8 周龄达到性成熟,繁殖期约 9 个月。雌性小鼠发情周期为 4~5 天,发情期持续 10~20 小时。每次排卵约 6~10 枚。妊娠期为 19~21 天;无菌交配所致假妊娠持续约 12 天。小鼠平均每胎产仔数为 5~12 只。约 21 日龄断奶。

雄性小鼠和大鼠在青春期(例如大鼠约 40~50 日龄)开始每日产生少量精子。大鼠需至 75~100 日龄(10~14 周龄)时,精子产生量和精子储备才达到最佳水平。雄性啮齿动物在性成熟后持续具有性欲,而雌性仅在发情期接受交配。雄性达到青春期后,还需 6~8 周才具有使雌性受孕的能力。

小鼠平均寿命为 18~24 个月;大鼠平均寿命为 18~36 个月。在保证营养均衡的前提下,限制热量摄入可延长寿命。宠物小鼠和大鼠肥胖较为常见,而实行热量限制的宠物通常寿命明显更长。

小鼠和大鼠的饲养管理

宠物小鼠和大鼠最适宜使用易于清洁、易于除臭,并且不易被啮咬或在笼角挖掘破坏的材料制成的笼舍。笼底可采用实底设计,但应具备防水且易于清洁的特点。应避免使用金属网底笼舍,因为大鼠和小鼠容易将足部,尤其是后肢,卡入网孔,导致骨折及其他损伤。

动物垫料可按用途(如接触性垫料、非接触性垫料、丰容垫料)或按材料分类,包括木质垫料(木屑、刨花、木皮、木丝及锯末)、纸质垫料(棉纤维、纸浆纤维、再生纸)、玉米垫料(玉米皮和玉米芯)、纤维素及蛭石等。垫料的主要作用是保持动物干燥和清洁。

宠物主人通常根据价格和易获得性选择垫料;实验动物兽医则主要根据成本及吸水性能进行选择。有些宠物垫料添加了柠檬香料和叶绿素,以产生宜人的气味。然而,这类垫料会刺激宠物啮齿动物,所含着色剂还可能使白色大鼠或小鼠的被毛染色。

过去,宠物鼠饲养者通常更喜欢使用纸质垫料和软木木屑(如经窑干处理的松木或杨木刨花),因为相比稻草,更换频率较低。未经热处理的木屑垫料(如松木或杨木)不应使用,因其含有挥发性化学物质,可刺激啮齿动物呼吸道并诱导肝酶活性(1,2)。纸质垫料无毒,即使误食也可被消化;而木质垫料被吞食后则可能导致肠道梗阻。

饲养者应结合勤换垫料与良好的饲养管理措施,如定期清洁笼舍、降低饲养密度以及保持较低的环境温度和湿度。这些措施有助于减少由粪便中尿素酶阳性细菌分解尿液中尿素所产生的有毒或有异味气体(如氨)的积聚。水族箱不适合作为大鼠和小鼠的笼舍,因为空气流通不足,容易造成氨气积聚。

要点和误区

  • 水族箱不适合作为大鼠和小鼠的笼舍,因为空气流通不足,容易造成氨气积聚。

环境温度和相对湿度受饲养管理方式及笼舍设计影响,因此笼内环境与房间环境可能存在较大差异。影响温湿度变化的因素包括笼舍材料及结构、笼内动物数量、垫料更换频率及垫料类型。

对于宠物小鼠和大鼠而言,选择垫料时最重要的因素是颗粒大小及可操作性。小鼠和大鼠通常避免使用细小颗粒垫料,而更偏好由较大、纤维状颗粒组成的垫料。

小鼠和大鼠最适宜的饲养温度为 18~26°C。相对湿度也应加以控制,但允许范围较温度更宽 (3)。适宜的相对湿度范围为 30%~70%。

适宜的温度和湿度对于预防环尾综合征(ringtail,尾部无血管性坏死)及防止呼吸系统疾病恶化十分重要。环尾综合征主要发生于低湿度环境中的幼龄大鼠。环境温度和湿度过高可导致热射病,并可间接引起慢性呼吸系统疾病失代偿,最终导致死亡。

宠物小鼠和大鼠饲养者应每日检查饮水瓶。小鼠仅缺水 1~2 小时,若同时环境温度剧烈波动,尤其高于 37°C,即可死亡。相比之下,健康大鼠对缺水和温度变化的耐受性较强。在 37.5°C 条件下,即使连续 7 天每天暴露 4 小时且暴露期间不提供饮水,健康大鼠仍可存活 (4)。

宠物小鼠和大鼠的最低饲养空间建议如下:

  • 体重 ≤ 200 g 的大鼠:每只至少 58 cm2;

  • 体重 ≥ 500 g 的大鼠:每只至少 152 cm2;

  • 体重 > 25 g 的小鼠:每只至少 38 cm2。

上述均属于较小的空间范围。兽医应建议宠物主人为其宠物提供更加宽敞的生活空间。

大多数啮齿动物环境丰容研究主要关注改善笼舍内部环境,而不是扩大笼舍面积。然而,大鼠更偏好较大的笼舍,实验研究提示,大鼠应拥有足够大的活动空间,最多可与另外 4 只大鼠共同生活 (5)。

建议用于饲养大鼠和小鼠的笼舍最低高度应充分考虑其正常姿势,包括完全以后肢站立、垂直活动、向上伸展及可能进行攀爬等行为。推荐最低笼高为:大鼠 30~38 cm,小鼠 18~20 cm。

环境丰容对于大鼠和小鼠均十分重要。例如,悬挂式布吊床深受大鼠喜爱,而将悬挂的塑料或不锈钢淋浴挂钩相互连接,可制成可摆动的链条玩具。大鼠比小鼠更常使用丰容设施,但通常在 3~4 天后便会失去兴趣。因此,定期轮换丰容玩具并引入新的丰容设施,有助于激发其好奇心。

零食也是一种有价值的环境丰容方式。从简单、价格低廉的零食(如每天一小块早餐麦片)到营养配方零食或无热量零食均可使用。大鼠也非常喜欢巧克力,少量饲喂(偶尔给予 1 粒巧克力豆作为奖励)不会引起中毒。

已经习惯被主人抓握的宠物小鼠和大鼠,会主动从主人手中取食零食。这种每日互动有助于主人及时发现宠物行为上的细微变化。患病啮齿动物通常会掩饰疾病症状,但患病大鼠对日常零食的兴趣会降低,这种变化可帮助主人在疾病尚可治疗和(或)可逆阶段及早发现问题。

雌雄啮齿动物混养会导致交配繁殖并产生后代。小鼠和大鼠均具有产后发情特性,产后即可再次受精。然而,囊胚在哺乳期间会发生着床延迟,通常待幼仔断奶后才开始着床,因此下一胎通常会在前一胎断奶后出生。若混养的异性啮齿动物既未分开饲养,也未进行绝育,则每 3~5 周便可能繁殖一胎。

要点和误区

  • 若混养的异性啮齿动物既未分开饲养,也未进行绝育,则每 3~5 周便可能繁殖一胎。

大鼠和小鼠均属于杂食性动物,摄食植物性和动物性食物。野外的大鼠和小鼠以各种种子、谷物及其他植物性食物为食,同时也采食无脊椎动物、小型脊椎动物及腐肉。其较强的食腐能力也是它们能够成功适应并扩散到各种地理环境的重要原因之一。

实验用啮齿动物的配制颗粒饲料使用方便,且营养均衡,适用于生长早期及繁殖阶段。然而,这类饲料脂肪含量较高、纤维含量较低,若自由采食,容易导致肥胖。因此,宠物小鼠和大鼠每日摄入的颗粒饲料应适当限量。

目前市面上已有专门为宠物啮齿动物配制的商品饲料。主人还应为宠物补充富含纤维的食物,如蔬菜、少量水果,以及偶尔给予零食。

食粪行为是大鼠和小鼠的正常行为。这是一种先天行为,因为即使是在专门培育用于科研的无菌啮齿动物中,也可观察到该行为。与兔从肛门直接摄食盲肠粪便不同,小鼠和大鼠是在笼底拾食粪粒。

啮齿动物摄食粪便的数量受物种、年龄、生理状态(例如妊娠期食粪行为增加)以及饲粮组成等因素影响。在营养均衡的饲粮条件下,大鼠摄食的粪便约占其排粪总量的 10%。群养时,大鼠还会摄食同伴排出的粪便。

群体特有气味部分来源于摄食粪便后的气味成分,这种群体气味有助于动物区分同群个体和外来个体。

小鼠每天约进行 6 次食粪行为。生长期小鼠食粪行为十分活跃,每天摄食约 13 粒粪便。但随着年龄增长,摄食量逐渐减少,到 2 岁时约降至每天 1.5 粒。

不同种类的宠物啮齿动物应分开饲养,以防止种间疾病传播。例如,大鼠鼻咽部正常菌群中携带念珠状链杆菌 (Streptobacillus moniliformis),而该菌可导致小鼠发生致命性败血症。

同种啮齿动物群养时,应采取措施保护易受攻击的个体,避免受到群体中攻击性较强成员的伤害,其中包括将幼龄动物与成年动物分开饲养。雌性啮齿动物通常可以和谐群养,但长期单独生活的雌鼠除外。

雄性大鼠一般能够和平共处,尤其是自幼共同饲养者;而陌生雄性大鼠若被置于同一笼舍,通常会发生打斗。雄性小鼠群养时通常会发生打斗,除非它们为同窝同养且生活环境中没有雌鼠。雄性小鼠最好单独饲养,或与雌性小鼠共同饲养。

大鼠属于社会性动物,互相梳理被毛是一种促进社会联系的行为。若长期单独饲养且缺乏人与环境的互动,大鼠可能发生孤养应激综合征,表现为惊跳反射增强和基础应激激素水平升高等 (6)。已经长期单独饲养的大鼠被放入具有社会经验的大鼠群体中时,通常会发生打斗、身体损伤和体重减轻。

幼龄大鼠应群养,以建立正常的社会联系。已单独饲养的大鼠不宜重新合群。因此,应建议宠物主人积极为宠物大鼠提供环境丰容,并保持充分的人际互动。

小鼠和大鼠的体格检查

观察小鼠和大鼠的生活环境能够为动物健康状况提供有价值的信息。由于小鼠和大鼠体型较小,体格检查所获得的信息往往有限。检查时应注意其活动水平、被毛状况、静止时的整体姿势,以及笼内是否存在血液或其他体液分泌物。

如果小鼠或大鼠出现呼吸困难或精神沉郁,抓持动物时必须格外谨慎,因为体格检查带来的应激可能导致严重衰弱的动物死亡。

要点和误区

  • 对出现呼吸困难或精神沉郁的小鼠或大鼠进行抓持时应格外谨慎,因为体格检查带来的应激可能导致严重衰弱的动物死亡。

经常接受温和抓握的宠物大鼠和小鼠通常只需轻度保定即可完成检查;而不配合的动物则需要更牢固的保定。小鼠最常用的保定方法是“捏颈保定”,即保定者用拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤,同时握住尾根固定动物。

用于大鼠体格检查的一种常用保定方法称为“棒球式保定”或“爪式保定”(见)。

称量体重对于计算药物的正确剂量至关重要,同时也有助于在正式体格检查开始前评估啮齿动物的性情。

小鼠和大鼠体格检查的重点包括:

  • 检查头部、耳部、眼部和鼻部是否有分泌物,并检查口腔及牙齿情况。观察头部淋巴结及腺体大小,并通过触诊评估其质地。头部检查通常是整个体格检查中最耗时的部分。

  • 触诊腹部,评估其质地及是否存在异常肿块。检查时切勿过度用力挤压,以免造成内脏破裂。

  • 仔细触诊乳腺及邻近区域,检查是否存在肿瘤。乳腺肿瘤在大鼠中较为常见。应注意,大鼠和小鼠的乳腺组织沿身体全长分布,因此检查时除腹部和腹股沟外,还应包括腋窝区域。

  • 检查肛门生殖区是否存在分泌物,以及被毛或皮肤是否有尿液或粪便污染。

  • 触诊四肢是否存在压痛或骨折,并重点检查足部,包括趾甲长度及足垫状况。

小鼠和大鼠被抓起时通常会排尿和排便。检查者应提前准备尿液试纸,以便立即进行尿液分析;粪便则可收集于小型试管中,留待后续检查。

小鼠和大鼠的呼吸频率及心率均较快,因此难以准确测量。与其测量数值,更重要的是在抓持动物之前观察是否存在呼吸困难。某些呼吸道感染(如支原体病)可呈亚临床感染,其异常表现往往更容易听到而不是看到。例如,大鼠可出现特征性的鼻塞样呼吸音,小鼠则可出现咔嗒样呼吸音,即使不用听诊器也能够听见。

小鼠和大鼠的静脉采血

由于小型啮齿动物,尤其是小鼠,体型较小且血管较细,因此采血较为困难。对于大鼠和小鼠,隐静脉或尾外侧静脉均可用于采集少量血液,以进行血涂片制作、血糖检测等。见、及。

牙龈静脉穿刺是从位于下颌门齿下方牙龈乳头区域的下唇下颌静脉采集血液(见)。

小鼠和大鼠牙龈静脉穿刺应在麻醉状态下进行,动物保持仰卧位。将下唇向后牵开,在两枚下颌门齿之间的正中线,以约 20~25° 角插入 28~30 G 针头。针尖进入牙龈约 2 mm。

采用该方法,大鼠约可采集 800 mcL 血液,小鼠约可采集 100 mcL。此外,该方法还可用于静脉快速注射药液(大鼠最大 1 mL;小鼠最大 150 mcL)(7)。

若需采集较大量的大鼠或小鼠血液,可采用前腔静脉 (cranial vena cava) 采血,但必须在镇静或麻醉状态下进行,以确保操作安全。小鼠采集较大量血液的其他方法,如面静脉穿刺或球后静脉丛采血,虽然具有一定应用价值,但容易引起疼痛和组织损伤,因此不适用于宠物小鼠的常规临床采血。

小鼠和大鼠的传染病

小鼠和大鼠的细菌感染

大鼠是念珠状链杆菌 (Streptobacillus moniliformis) 的天然宿主。该菌是大鼠鼻咽部正常菌群中的共生菌,不会引起大鼠发病。然而,被大鼠咬伤的人可感染念珠状链杆菌 (S moniliformis),并发生鼠咬热,这是一种可能致命的疾病。

与大鼠同笼饲养的小鼠可能感染念珠状链杆菌,并发生致命性败血症,其特征包括多发性关节炎、颈部淋巴结炎、肺炎和脾肿大。

由感染性病原引起的呼吸系统疾病是大鼠最常见的健康问题。引起明显临床疾病的三种主要呼吸道病原体包括:肺支原体 (Mycoplasma pulmonis)、肺炎链球菌 (Streptococcus pneumoniae) 和库氏棒杆菌 (Corynebacterium kutscheri)

其他病原体,如仙台病毒(一种副黏病毒)、小鼠肺炎病毒(一种副黏病毒)、大鼠呼吸道病毒(一种汉坦病毒)、啮齿动物丝状杆菌 (Filobacterium rodentium)(原称纤毛相关呼吸道杆菌 (cilia-associated respiratory bacillus, CARB))以及 Haemophilus spp 细菌,均属于小鼠和大鼠的次要呼吸道病原体,单独感染时很少引起明显疾病。然而,这些次要呼吸道病原体可作为协同病原体,与主要呼吸道病原体共同作用,导致两种主要临床综合征:慢性呼吸道疾病 (CRD) 和细菌性肺炎。

慢性呼吸道疾病 (CRD) 又称鼠呼吸道支原体病,是目前研究最为深入的大鼠多因素性呼吸道感染。肺支原体 (M pulmonis) 是 CRD 的主要病原体。一项回顾性研究显示,由细菌感染导致呼吸困难的大鼠生存时间为 6~44 个月,中位生存期为 24 个月 (8)。

大鼠 CRD 的临床症状差异较大。初次感染通常无明显临床症状;早期病变可同时累及上、下呼吸道,表现包括鼻塞样呼吸音、鼻液、呼吸频率增加、体重减轻、弓背姿势、被毛粗乱、头部倾斜和红泪症。呼吸困难是本病最主要的临床表现,其发生与纤毛运动停止、随后呼吸道内富含溶菌酶的炎性渗出物积聚,以及炎症导致细支气管壁损伤继发的支气管扩张和细支气管扩张有关。慢性病例常并发中耳感染(经咽鼓管传播)。

使用抗菌药物治疗可缓解大鼠 CRD 的临床症状,但不能彻底清除感染。较严重病例通常可采用恩诺沙星 (10 mg/kg) 或多西环素 (5~10 mg/kg),两者均为口服,每 12 小时给药一次,连续 14 天 (9)。

支气管扩张剂是治疗大鼠和小鼠 CRD 炎症反应的主要治疗药物,可采用以下方式给药:口服茶碱(10 mg/kg,根据需要每 12 小时一次)(10);雾化吸入沙丁胺醇(albuterol,又称 salbutamol)(100 μg/只大鼠,于小型雾化箱内吸入,每 4~6 小时一次)(10)。此外,可采取以下辅助治疗措施以改善疾病状况:每日用 7% 高渗盐水进行雾化治疗,以破坏呼吸道内的黏液生物膜;每日清除污染垫料,降低笼内氨浓度。

对于大鼠和小鼠 CRD 慢性病例,还可能需要给予镇痛药或补充营养等支持性治疗。虽然长期使用抗菌药物并非理想方案,但对于停药后反复复发的 CRD 大鼠,低剂量多西环素长期治疗(5~10 mg/kg,口服,每 24 小时一次)有助于预防急性复发 (9)。多西环素不仅对支原体具有杀菌作用,还具有显著的免疫调节作用,可减轻慢性气道炎症。

对于临床兽医而言,大鼠和小鼠 CRD 最重要的特点是:呼吸道支原体病的临床表现差异很大,这是由于环境因素、宿主因素及病原体因素共同影响宿主—病原体相互作用所致。这些因素包括:笼内氨浓度、同时感染仙台病毒、冠状病毒(涎泪腺炎病毒)、小鼠肺炎病毒、大鼠呼吸道病毒和(或)啮齿动物丝状杆菌 (F rodentium)、宿主遗传易感性、支原体菌株毒力,以及维生素 A 或维生素 E 缺乏等。

虽然 CRD 在实验室大鼠中较少发生,但绝大多数宠物大鼠均不同程度患有 CRD。美国西北地区一项宠物鼠繁殖场调查显示,几乎所有(95%)鼠群均检测到啮齿动物丝状杆菌和肺支原体感染,约半数鼠群还检测到其他病毒性呼吸道病原体 (11)。

小鼠和大鼠的细菌性肺炎几乎均由肺炎链球菌 (S pneumoniae) 引起;但在多数情况下,肺炎链球菌常与肺支原体、仙台病毒或啮齿动物丝状杆菌共同感染。感染库氏棒杆菌 (C kutscheri) 也可导致肺炎,但通常仅发生于机体虚弱或免疫抑制的动物。在宠物大鼠中,免疫抑制可由糖尿病、肿瘤或营养缺乏引起。由库氏棒杆菌导致的肺炎在宠物大鼠中较为少见。

由肺炎链球菌引起的肺炎在大鼠中可突然发病。幼龄大鼠较成年大鼠病情更严重,且往往唯一表现为猝死。成年大鼠可出现呼吸困难、鼻塞样呼吸音及腹式呼吸。由于不断擦拭鼻孔,鼻孔周围及前肢爪部可见脓性渗出物。

小鼠和大鼠细菌性肺炎的初步诊断,可依据对渗出物进行革兰氏染色或细胞学检查时发现大量革兰氏阳性双球菌。重度菌血症是疾病晚期的严重并发症,可导致多器官脓肿形成及梗死。

大鼠和小鼠细菌性肺炎推荐使用阿莫西林/克拉维酸治疗(20 mg/kg,PO,每 12 小时一次,持续至临床症状及影像学检查恢复正常)(9)。耐 β-内酰胺酶青霉素类药物,如氯唑西林、苯唑西林和双氯西林,也可经口服或肠外给药按经验剂量用于治疗大鼠和小鼠细菌性肺炎;但目前尚无针对该适应证的公开推荐剂量 (12)。

由金黄色葡萄球菌 (Staphylococcus aureus) 感染引起的溃疡性皮炎,通常继发于毛螨感染导致的自我损伤,或更常见于抓挠发炎唾液腺上方皮肤所致。大鼠对金黄色葡萄球菌 (S aureus) 感染具有较强的天然抵抗力。治疗措施包括修剪后肢趾甲、清洁溃疡皮肤,并局部应用抗菌药物。通常无需全身治疗。

小鼠发生临床呼吸系统疾病最常见的两种病因是仙台病毒感染和肺支原体感染。仙台病毒可引起急性呼吸道感染,患病小鼠表现为咔嗒样呼吸音及轻度呼吸困难。新生鼠和断奶鼠可能死亡,而成年小鼠通常可在 2 个月内恢复。

如果小鼠呼吸道疾病的临床表现不符合上述仙台病毒感染的特点,则最可能的原因是并发支原体感染。肺支原体可引起慢性肺炎、化脓性鼻炎,偶见中耳炎。咔嗒样呼吸音和呼吸困难主要由鼻腔炎症、鼻道增厚以及大量脓性渗出物积聚所致。存活动物常进一步发展为慢性支气管肺炎、支气管扩张及肺脓肿。

抗菌药物可缓解小鼠呼吸系统疾病的临床症状,但不能清除感染。

小鼠和大鼠的病毒感染

小鼠和大鼠的病毒性疾病较为常见。然而,大多数感染均为亚临床感染,仅对实验动物具有重要意义,因为这些感染可能对科研结果产生显著影响。

唾液泪腺炎病毒 (SDAV) 是一种冠状病毒,可引起大鼠颈部唾液腺炎症和水肿。感染大鼠的主人常将其描述为患有“腮腺炎”。

SDAV 感染传染性极强。感染初期可引起鼻炎,随后发生导管上皮细胞坏死(见)以及唾液腺和泪腺炎性肿胀(见)。颈部淋巴结也会发生肿大。

目前尚无针对唾液泪腺炎的治疗方法。受累腺体通常可在 7~10 天内修复,临床症状一般于 30 天内消退,仅遗留轻微残余病变。

在急性炎症期,由于上呼吸道管腔直径缩小,患病大鼠发生麻醉相关死亡的风险明显增加。

继发于泪腺功能障碍,可出现多种眼部病变,包括结膜炎、角膜炎、角膜溃疡、虹膜前粘连及前房积血。这些眼部病变通常能够恢复;但少数病例可进一步发展为慢性角膜炎及巨眼症(包括牛眼或眼球积水)。

小鼠和大鼠的寄生虫感染

小鼠和大鼠的原虫感染

小鼠体内寄生虫较为常见,但消化道中经常检出的寄生虫仅有两种被认为具有致病性,即小鼠螺旋核虫 (Spironucleus muris) 和小鼠贾第鞭毛虫 (Giardia muris)。即便如此,在免疫功能正常的宿主体内,它们通常不会引起临床症状。

寄生虫感染的诊断主要依据新鲜肠内容物或粪便湿片中发现具有特征性的滋养体。治疗可采用甲硝唑(10~40 mg/kg,PO,每 24 小时一次;或按 2.5 mg/mL 的浓度加入饮水中,连续使用 14 天)(9)。但是,该治疗不能完全清除感染。

大鼠和小鼠的线虫感染

蛲虫广泛存在,在小鼠中通常被认为不具有致病性。小鼠最常见的蛲虫有两种:隐匿管状线虫和四翼尖尾线虫 (Aspiculuris tetraptera)。大鼠除可感染上述两种蛲虫外,还可感染大鼠蛲虫(见)。

小鼠感染蛲虫时,唯一可见的临床表现常为因持续努责而导致的直肠脱垂。诊断隐匿管状线虫 (S obvelata) 或大鼠蛲虫 (S muris) 感染时,可采用透明玻璃纸胶带贴取肛周皮肤样本进行检查,因为雌性成虫会将虫卵产于肛门周围。而四翼尖尾线虫 (A tetraptera) 不会在该部位产卵,因此需通过粪便涂片检查或粪便漂浮检查进行确诊。

采用以下药物均可清除小鼠体内蛲虫感染:伊维菌素(2 mg/kg,PO,共给药 2 次,间隔 10 天)(13);或芬苯达唑(20 mg/kg,PO,每 24 小时一次,连续 5 天)(9)。

小鼠和大鼠的螨虫感染

小鼠发生脱毛和皮炎最常见的感染性病因是毛螨感染。患鼠常表现为广泛性被毛稀疏,尤其见于头部、躯干等不易自行梳理的部位。被毛常呈油腻外观;严重感染时,可出现明显瘙痒及因抓挠造成的自伤性皮肤溃疡。

小鼠常见的毛螨有 3 种:小鼠毛螨 (Myobia musculi),小鼠毛囊螨 (Myocoptes musculinus) 和亲和拉德福螨 (Radfordia affinis)。其中,小鼠毛螨是临床意义最重要的小鼠螨虫(见)。

螨虫感染通常并非由单一螨种引起,而是多种螨虫混合感染。螨虫主要通过与感染动物直接接触或接触受污染的垫料传播。

小鼠螨虫感染的诊断主要依据使用手持放大镜或体视显微镜,在毛干上发现成螨、若螨或虫卵。成螨和若螨呈珍珠白色、细长形;虫卵呈椭圆形,附着于毛根部,或存在于成熟雌螨体内。

小鼠螨虫感染采用伊维菌素治疗(0.2 mg/kg,SC 或 PO,共给药 2 次,间隔 10 天)(14)。另一种方法是将伊维菌素溶液按 1:100(以等体积水和丙二醇稀释)配制后,每隔 10 天滴于小鼠头顶部,共处理 3 次,使药物通过梳理行为及舔食在全身扩散 (15)。

大鼠发生体外寄生虫感染较小鼠少见。偶可发现剑形拉德福螨 (Radfordia ensifera) 感染。虽然剑形拉德福螨通常不会造成明显危害,但严重感染可导致动物自伤及溃疡性皮炎。

热带鼠螨(见),又称红鼠螨 (red mite),是一种吸血性寄生螨,主要寄生于野生大鼠,如褐家鼠 (Rattus norvegicus) 和黑家鼠 (Rattus rattus)。

热带鼠螨宿主范围广,偶可感染生活在老旧建筑中或在建筑施工、翻修扰动了原有野生啮齿动物群体时受到暴露的宠物仓鼠、沙鼠、大鼠和小鼠。

热带鼠螨可在环境中长期存活,并能迁移较远距离寻找新的宿主。如果找不到合适的啮齿动物宿主,也会叮咬人类。尽管其俗称为“热带鼠螨”,实际上该螨广泛分布于全球,在热带和温带地区均可发现。

螨虫吸血前呈白色,吸血饱食后变为红褐色。严重感染时,宠物啮齿动物被毛中可见大量螨虫,外观犹如细小木屑。热带鼠螨感染通常不会引起宠物啮齿动物明显临床症状;但严重感染时,可导致小型啮齿动物贫血、衰弱、虚弱、瘙痒,甚至死亡。

除造成宿主不适外,热带鼠螨还是啮齿动物丝虫——卡氏丽线虫 (Litomosoides carinii) 的传播媒介,并可能传播多种人类病原体。多数感染发生于晚春或初夏,此时幼鼠开始离巢,螨虫也开始寻找新的吸血宿主。

由于热带鼠螨主要生活于垫料中,仅在吸血时附着于宿主,因此必须同时处理环境和动物本身。控制感染时,可采取以下措施:为宿主动物洗浴和/或局部使用塞拉菌素(15 mg/kg,一次给药,必要时 21 天后重复一次)(9)。此外,可使用对啮齿动物安全的杀虫剂处理宠物笼舍,例如含 7.4% 氯菊酯的药棉(每周放置于笼内一次,连续 6 周)、氟虫腈喷雾或拟除虫菊酯类杀虫剂。

彻底清除热带鼠螨感染的最后一步,是通过采取适当的家庭害虫防治措施,彻底消灭螨虫来源。

小鼠和大鼠的真菌感染

宠物小鼠和大鼠较少发生皮肤癣菌病(癣)。本病由须毛癣菌 (Trichophyton mentagrophytes) 引起。若出现病变,最常见于面部、头部、颈部和尾部。病变表现为皮屑增多,可见斑片状脱毛,并伴有不同程度的红斑和结痂。瘙痒通常较轻或不存在,且病变在 Wood 灯下无荧光表现。

临床正常的小鼠被毛中可分离出须毛癣菌,但在大鼠中较为罕见。

大鼠和小鼠的肿瘤

大鼠最常见的皮下肿瘤是乳腺纤维腺瘤。由于乳腺组织分布广泛,因此肿瘤可发生于自颈部至腹股沟区的任何部位。肿瘤直径可达 8~10 cm,雄性和雌性均可发生。

大鼠肿瘤切除术的手术操作相对简单。如果肿瘤为良性,据报道乳房切除术后的存活率较高。与未绝育的大鼠相比,卵巢切除术后的大鼠乳腺肿瘤和垂体肿瘤发生率均明显降低。然而,未受累乳腺组织中乳腺纤维腺瘤复发较为常见,因此通常需要多次手术。

在乳腺肿瘤形成之前,即 7 月龄以前对雌性大鼠实施绝育,可降低其日后发生乳腺肿瘤的风险 (16)。在切除乳腺肿瘤的同时实施绝育,并未证实能够预防肿块复发 (17)。

要点和误区

  • 在乳腺肿瘤形成之前,即 7 月龄以前对雌性大鼠实施绝育,可降低其日后发生乳腺肿瘤的风险。

有病例报道显示,在手术切除后植入地氯瑞林植入剂可成功预防肿块复发。此外,在患有乳腺纤维腺瘤的大鼠中,有 75% 同时存在垂体肿瘤 (17)。

在未并发乳腺肿瘤的老龄大鼠中,垂体肿瘤也很常见;临床症状包括后肢轻瘫、后肢瘫痪、视力改变及行为改变。部分肿瘤可分泌催乳素,从而导致自发泌乳。使用卡麦角林治疗(0.6 mg/kg,口服,每 72 小时一次,终生治疗)可缩小肿瘤体积并有助于消除临床症状;然而,肿瘤仍有再次生长的可能 (18)。由于该类肿瘤的位置特殊,因此无法进行外科手术治疗。

与大鼠不同,小鼠乳腺肿瘤几乎均为恶性,且通常不适合进行手术切除。与皮肤相关的自发性肿瘤中,以乳腺腺癌最常见,其次为纤维肉瘤。

小鼠乳腺肿瘤的发生率因品系以及是否存在小鼠乳腺肿瘤病毒而异。在某些品系中,其发生率可高达 70% (19)。在野生小鼠和远交系小鼠中,纤维肉瘤的发生率为 1%~6% (20)。

小鼠皮下肿瘤几乎均为恶性,且在确诊时通常已经发生溃疡。肿瘤可通过手术切除进行治疗,但复发率较高,预后较差。

据估计,小鼠淋巴组织和造血组织肿瘤的患病率约为 1%~2% (21)。这些肿瘤可表现为淋巴瘤或白血病,其中最常见的是起源于胸腺的淋巴细胞性白血病。小鼠还有一个不同寻常的特点,即肺部肿瘤发生率相对较高,而且通常为原发性肺肿瘤,而非由其他部位转移形成。

小鼠和大鼠的其他疾病和医源性疾病

小鼠和大鼠的牙齿过度生长

由于门齿终生持续萌出,牙齿疾病在宠物小鼠和大鼠中十分常见。门齿过度生长是大鼠和小鼠最常见的牙齿问题(不同于豚鼠和毛丝鼠最常见的颊齿咬合不正)。

门齿过度生长可使用高速磨钻轻松修整,该方法可切断门齿而不会造成牙齿纵裂或碎裂,并留下平整光滑的切面。

使用咬骨钳修剪牙齿不能获得良好的长期效果,还可能引发多种问题。门齿可能发生纵向断裂,裂纹可延伸至牙根尖部,导致动物不适。细菌可进入裂隙,经牙髓腔向根尖扩散,并引起根尖脓肿。

拔除门齿可作为修整门齿的替代方法;但由于门齿牙根较长,该操作难度较大。

小鼠和大鼠的年龄相关性疾病

慢性进行性肾病是老龄大鼠常见疾病。患病肾脏肿大、颜色苍白,表面凹凸不平、呈斑驳状,常伴有针尖大小的囊肿。病理改变包括进行性肾小球硬化及广泛的肾小管间质性病变,主要累及近端曲小管。

患有慢性进行性肾病的大鼠常伴有蛋白尿,每日尿蛋白丢失量 > 10 mg。本病雄性发生较早且病情较雌性严重。饮食因素似乎在肾脏疾病进展中发挥重要作用。限制热量摄入、给予低蛋白 (4%~7%) 日粮以及限制膳食蛋白来源,可降低本病的发生率并减轻疾病严重程度。治疗是支持性的。

尾部无血管性坏死,或称尾环病(见)主要发生于饲养在低湿度环境中的幼龄大鼠,偶见于幼龄小鼠。如果诊断为尾环病,治疗方法为在坏死环状缩窄部位以下截除尾部。

小鼠的皮肤病

宠物小鼠发生的大多数疾病均与皮肤有关,占所有病例的 25% 以上 (22)。行为异常、饲养管理相关问题以及微生物或寄生虫感染通常较容易诊断和治疗。然而,许多以慢性皮肤损伤或皮肤溃疡(常继发细菌定植)为特征的皮肤病被诊断为特发性疾病。此类疾病患鼠通常对局部或全身治疗均无反应,因此往往需要实施安乐死。

在小鼠中,特发性皮肤病的特征为伴有瘙痒的溃疡性皮炎,且检查结果排除原发性体外寄生虫感染、细菌感染或真菌感染。对部分近交系小鼠进行组织学检查和免疫荧光显微镜检查发现,其基础病变为由免疫复合物沉积于真皮血管所致的血管炎 (23)。

研究认为,饮食因素及脂肪酸代谢失调与这些小鼠发生溃疡性皮炎有关。近期一项系统性文献综述显示,限制饮食热量摄入可降低发生溃疡性皮炎的风险,但仍需进一步研究以阐明本病的流行病学特点 (24)。

针对小鼠皮肤病已尝试多种局部治疗方案,包括:2% 利多卡因凝胶中的 0.2% 环孢素、0.015% 中性缓冲次氯酸、三联抗生素软膏、抗菌药物与糖皮质激素复方软膏,以及 0.005% 稀释次氯酸钠溶液等。其他全身治疗方法包括补充膳食维生素 E、使用布洛芬以及马罗匹坦枸橼酸盐。

上述治疗方法均无法达到 100% 的成功率。局部治疗应结合定期修剪趾甲,尤其是后足趾甲,以防止对溃疡皮肤造成进一步损伤。

理毛行为和打斗是小鼠社会优势地位的表现,是反映群体内个体社会等级和支配地位的一种行为。理毛行为是群养小鼠特有的行为,优势个体会啃咬同笼小鼠口鼻部、眼周或身体其他部位的胡须和被毛。除脱毛外,通常不存在其他病变,且仅优势个体能够保留完整被毛。

将优势个体移出鼠笼后,理毛行为即可停止;然而,另一只小鼠可能会取代其成为新的优势个体。理毛行为在群养雌性小鼠中较为常见。雄性小鼠(自出生起共同饲养的同窝鼠除外)更容易发生打斗,且往往十分激烈,可相互造成严重咬伤,尤其多见于臀部、尾部和肩部。

因自身与笼具摩擦造成的机械性擦伤,是小鼠一种饲养管理相关性脱毛。口鼻两侧可出现小片状脱毛。其原因包括金属食槽、设计不良的饮水器开口以及金属笼盖长期摩擦。与理毛行为导致的脱毛不同,这类脱毛可伴有皮炎。治疗方法为更换设计不合理的笼具设备。

单独饲养的小鼠可表现出异常刻板行为,如多饮和啃咬笼具,导致机械性擦伤和脱毛。此时,更换笼具设备无济于事,而应提供跑轮、空心管等环境丰容设施。

哺乳期小鼠常出现腹部及胸部腹侧脱毛,这属于正常现象,几乎均与乳腺广泛分布有关。

有时,宠物小鼠可表现出螨虫感染的临床症状,但检查未发现螨虫,也无近期接触其他动物的病史。此时,活组织检查有助于鉴别活动性螨病与由螨虫或其他过敏原(如木屑垫料)引起的皮肤超敏反应。

皮肤超敏反应在某些近交系小鼠中已有明确报道,其特征为严重瘙痒、全身大量细小皮屑,并偶见溃疡性皮炎。

小鼠皮肤肿块通常为肿瘤或脓肿。细针穿刺活检通常可明确其内容物性质,并有助于作出诊断。

小鼠皮肤中常可分离出 3 种机会性病原体——金黄色葡萄球菌 (Staphylococcus aureus)、嗜肺巴氏杆菌 (Pasteurella pneumotropica) 和化脓性链球菌 (Streptococcus pyogenes),这些病原体还可导致其他器官形成脓肿。青霉素类或头孢菌素类抗菌药物联合脓肿切开引流及清创治疗通常有效。

大鼠的红泪症

大鼠的哈德氏腺位于眼球后方,可分泌卟啉类物质。在应激和疾病状态下,卟啉分泌增加,使泪液呈红色(见)。

要点和误区

  • 大鼠位于眼球后方的哈德氏腺在应激和疾病状态下会分泌卟啉,使泪液呈红色。与血液不同,卟啉在 Wood 灯下可产生荧光。

当富含卟啉的泪液在眼周和外鼻孔周围干燥后,外观类似血痂。因此,饲主常描述其宠物大鼠“眼睛和鼻子出血”。利用 Wood 灯可轻易将卟啉与血液区分,因为卟啉在紫外光下会发出荧光。

虽然红泪症本身并非病理性疾病,但它是疼痛、疾病或保定等急性应激所致的结果。出现该症状通常提示存在慢性基础疾病。

小鼠和大鼠的人兽共患病风险

2020 年一项关于鼠咬伤病例的调查显示,在美国,鼠咬热病例中 50% 以上发生于儿童和青少年(0~19 岁)(25)。

鼠咬热由念珠状链杆菌 (Streptobacillus moniliformis) 感染引起,在人类可表现为菌血症和败血症,临床特征包括发热、寒战、肌痛、关节痛、头痛和呕吐。四肢(尤其是手掌和足底)可出现瘀点样皮疹,有时可遍及全身。潜伏期为 3~10 天(平均 5 天)。

患鼠咬热的婴幼儿和儿童常发生严重腹泻,并导致体重减轻。未经治疗患者的病死率为 7%~13%。感染后,50%~75% 的患者会发生多关节炎 (26)。若早期给予注射用青霉素治疗,预后良好。死亡病例通常与就诊延迟或疾病识别延迟有关。

鼠咬热早期临床表现缺乏特异性,加之念珠状链杆菌 (Streptobacillus moniliformis) 培养较困难,因此容易导致诊断延误或漏诊。不建议将大鼠作为儿童宠物。饲养宠物大鼠的成年人应养成勤洗手的习惯,并在接触大鼠或清洁鼠笼时避免手口接触。

要点和误区

  • 不建议将大鼠作为儿童宠物,因为大鼠可能咬伤儿童并传播由念珠状链杆菌感染引起的人畜共患病——鼠咬热。

人类偶有但持续有报道指出,可因接触宠物啮齿动物而感染热带鼠螨,并发生皮炎,表现为红斑性丘疹。由于瘙痒剧烈,患者常抓挠皮肤。偶尔还可出现水疱、荨麻疹样斑块、弥漫性红斑或出血。皮损通常发生于衣物覆盖部位(如上肢和躯干),而面部及指缝一般不受累。

大量证据表明,热带鼠螨可携带并具有传播多种人类病原体的潜力 (27, 28)。实验研究已证实,热带鼠螨可传播以下病原体:

研究人员还在热带鼠螨体内检测到以下病原体 (29, 30):

  • 巴尔通体属 (Bartonella spp)

  • 疏螺旋体属 (Borrelia spp)(莱姆病)

  • 贝纳柯克斯体 (Coxiella burnetii)(Q 热)

  • 汉坦病毒

  • 立克次体属 (Rickettsia spp)

作为皮肤癣菌的无症状携带者,宠物小鼠可将皮肤癣菌病传播给饲主,尤其是儿童,因此具有人畜共患病风险。

关键点

  • 适宜的饲养管理是维持宠物小鼠和大鼠健康的关键。使用合适的垫料并定期清洁鼠笼,有助于预防呼吸系统疾病,因为氨浓度升高的环境会加重此类疾病。

  • 由于小鼠和大鼠体型较小,应采用适当的保定方法,在满足临床操作需要的同时尽量减少应激。尤其是在小鼠采血时,应注意避免一次采集过多血液。

  • 老龄大鼠常发生肿瘤,其中以乳腺纤维腺瘤最为常见。若大鼠患有乳腺肿瘤,应始终考虑是否同时存在垂体肿瘤。推荐治疗方案为手术切除后植入地氯瑞林植入剂,以降低复发风险。在 7 月龄前对雌性大鼠实施绝育,可降低其日后发生乳腺肿瘤的风险。

了解更多信息

  • Frohlich J. Rats and mice.In:Quesenberry KE, Orcutt CJ, Mans C, Carpenter JW, eds.Ferrets, Rabbits, and Rodents:Clinical Medicine and Surgery.4th ed. Elsevier; 2021:345-367.

  • Turner PV, Wheler CL, Beaufrère H, Fabian N, Harkness JE, eds.Harkness and Wagner's Biology and Medicine of Rabbits and Rodents.6th ed. John Wiley & Sons; 2025.

  • 另请参阅面向宠物主人的相关内容:小鼠和大鼠。

参考文献

  1. Vesell ES.Induction of drug-metabolizing enzymes in liver microsomes of mice and rats by softwood bedding.Science 1967:157(3792):1057-1058. doi:10.1126/science.157.3792.1057

  2. Nevalainen T, Vartiainen T. Volatile organic compounds in commonly used beddings before and after autoclaving.Scand J Lab Anim Sci.1996;23(2). doi:10.23675/sjlas.v23i2.793

  3. National Research Council, Institute for Laboratory Animal Research, Division on Earth and Life Studies, Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals.Guide for the Care and Use of Laboratory Animals.8th ed. National Academies Press; 2011. https://grants.nih.gov/grants/olaw/guide-for-the-care-and-use-of-laboratory-animals.pdf

  4. Barney CC, Kuhrt DM.Intermittent heat exposure and thirst in rats.Physiol Rep. 2016;4(8):e12767. doi:10.14814/phy2.12767

  5. Patterson-Kane EG.Cage size preference in rats in the laboratory.J Appl Anim Welf Sci.2002;5(1):63-72. doi:10.1207/S15327604JAWS0501_5

  6. Weiss IC, Pryce CR, Jongen-Rêlo AL, Nanz-Bahr NI, Feldon J. Effect of social isolation on stress-related behavioural and neuroendocrine state in the rat.Behav Brain Res.2004;152(2):279-295. doi:10.1016/j.bbr.2003.10.015

  7. de Oliveira DT, Souza-Silva E, Tonussi CR.Technical report: gingival vein punction: a new simple technique for drug administration or blood sampling in rats and mice.Scand J Lab Anim Sci.2009;36(2):109–113. doi:10.23675/sjlas.v36i2.174

  8. Fouriez-Lablée V, Vergneau-Grosset C, Kass PH, Zwingenberger AL.Comparison between thoracic radiographic findings and postmortem diagnosis of thoracic diseases in dyspneic companion rats (Rattus norvegicus).Vet Radiol Ultrasound.2017;58(2):133-143. doi:10.1111/vru.12459

  9. Morrisey JK, Carpenter JW.Formulary.In:Quesenberry KE, Orcutt CJ, Mans C, Carpenter JW, eds.Ferrets, Rabbits, and Rodents:Clinical Medicine and Surgery.4th ed. Elsevier; 2021:620-630.

  10. Meredith A. BSAVA Small Animal Formulary:B 部分:Exotic Pets.9th ed. British Small Animal Veterinary Association; 2015.

  11. Graham JE, Schoeb TR.Mycoplasma pulmonis in rats.J Exot Pet Med.2011:20(4);270-276. doi:10.1053/j.jepm.2011.07.004

  12. Donnelly TM.Disease problems of small rodents.In:Quesenberry KE, Carpenter JW.Ferrets, Rabbits, and Rodents:Clinical Medicine and Surgery.2nd ed. Saunders; 2004:299-315. doi:10.1016/B0-72-169377-6/50031-9

  13. Flynn BM, Brown PA, Eckstein JM, Strong D. Treatment of Syphacia obvelata in mice using ivermectin.Lab Anim Sci.1989(5);39:461-463.

  14. Frohlich J, Mayer J. Rodents.In:Carpenter JW, Harms CA, eds.Carpenter's Exotic Animal Formulary.6th ed. Saunders; 2023:530-573. doi:10.1016/B978-0-323-83392-9.00009-5

  15. Baumans V, Havenaar R, van Herck H, Rooymans TP.The effectiveness of Ivomec and Neguvon in the control of murine mites.Lab Anim.1988;22:243-245. doi:10.1258/002367788780746368

  16. Planas-Silva MD, Rutherford TM, Stone MC.Prevention of age-related spontaneous mammary tumors in outbred rats by late ovariectomy.Cancer Detect Prev.2008;32(1):65-71. doi:10.1016/j.cdp.2008.01.004

  17. Vergneau-Grosset C, Keel MK, Goldsmith D, Kass PH, Paul-Murphy J, Hawkins MG.Description of the prevalence, histologic characteristics, concomitant abnormalities, and outcomes of mammary gland tumors in companion rats (Rattus norvegicus): 100 cases (1990–2015).J Am Vet Med Assoc.2016;249(10):1170-1179. doi:10.2460/javma.249.10.1170

  18. Mayer J, Sato A, Kiupel M, DeCubellis J, Donnelly T. Extralabel use of cabergoline in the treatment of a pituitary adenoma in a rat.J Am Vet Med Assoc.2011;239(5):656-660.Erratum in:J Am Vet Med Assoc.2011;239(8):1089. doi:10.2460/javma.239.5.656

  19. Squartini F, Pingitore R. Tumours of the mammary gland.In:Turusov VS, Mohr U, eds.Tumours of the Mouse.2nd ed. International Agency for Research on Cancer; 1994:47-100.

  20. Heider K, Eustis SL.Tumors of the soft tissues.In:Turusov VS, Mohr U, eds.Tumours of the Mouse.2nd ed. International Agency for Research on Cancer; 1994:611-631.

  21. Whary MT, Baumgarth N, Fox JG, Barthold SW.Biology and diseases of mice.In Fox JG, Anderson LC, Otto G, Pritchett-Corning KR, Whary MT, eds.Laboratory Animal Medicine.3rd ed. Academic Press; 2015:43-149. doi:10.1016/B978-0-12-409527-4.00003-1

  22. Krogstad AP, Franklin CL, Besch-Williford CL.An epidemiological and diagnostic approach to murine skin lesions [abstract].In:Proceedings of the 52nd American Association for Laboratory Animal Science National Meeting, Baltimore; 2001:94.

  23. Andrews AG, Dysko RC, Spilman SC, Kunkel RG, Brammer DW, Johnson KJ.Immune complex vasculitis with secondary ulcerative dermatitis in aged C57BL/6NNia mice.Vet Pathol.1994;31(3):293-300. doi:10.1177/030098589403100301

  24. Sargent JL, Koewler NJ, Diggs HE.Systematic literature review of risk factors and treatments for ulcerative dermatitis in C57BL/6 mice.Comp Med.2015;65(6):465-472. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC4681240

  25. Kache PA, Person MK, Seeman SM, McQuiston JR, McCollum J, Traxler RM.Rat-bite fever in the United States: an analysis using multiple national data sources, 2001-2015.Open Forum Infect Dis.2020;7(6):ofaa197. doi:10.1093/ofid/ofaa197

  26. Center for Food Security and Public Health.Rat bite fever [factsheet].Updated May 2021.Accessed April 27, 2026. https://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/pdfs/rat_bite_fever.pdf

  27. d'Ovidio D, Noviello E, Santoro D. Prevalence and zoonotic risk of tropical rat mite (Ornithonyssus bacoti) in exotic companion mammals in southern Italy.Vet Dermatol.2018;29(6):522-e174. doi:10.1111/vde.12684

  28. Schwab M, Allen B, Sulkin SE.The tropical rat mite (Liponyssus bacoti) as an experimental vector of Coxsackie virus.Am J Trop Med Hyg.1952;1(6):982-986. doi:10.4269/ajtmh.1952.1.982

  29. Reeves WK, Loftis AD, Szumlas DE, et al. Rickettsial pathogens in the tropical rat mite Ornithonyssus bacoti (Acari:Macronyssidae) from Egyptian rats (Rattus spp.).Exp Appl Acarol.2007;41(1-2):101-107. doi:10.1007/s10493-006-9040-3

  30. Lopatina IuV, Vasil'eva IS, Gutova VP, et al. [An experimental study of the capacity of the rat mite Ornithonyssus bacoti (Hirst, 1913) to ingest, maintain and transmit Borrelia].Article in Russian.Med Parazitol (Mosk).1999;2:26-30. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10703202