滑液囊支原体最常引起鸡、火鸡和其他禽类的亚临床型上呼吸道感染。该病原体亦可引发渗出性腱鞘炎和滑膜炎，即传染性滑膜炎。实时 PCR 检测已成为最常用的诊断方法。饲料中添加抗菌药物有助于预防滑膜炎，但对已发病例无效。通过防控措施和基于血清学的监测计划，美国大多数商业鸡和火鸡养殖群已成功清除滑液囊支原体。
滑液囊支原体最初被认为是鸡和火鸡的一种急性至慢性感染，会导致渗出性肌腱炎和滑膜炎（传染性滑膜炎），而气囊炎、肌腱炎和滑膜炎导致加工厂的废弃率增加。该病最常见表现为上呼吸道的亚临床感染。
滑液囊支原体感染可引发气囊炎，无论是否伴随新城疫病毒或传染性支气管炎病毒等其他呼吸道病原体的共同感染。
滑液囊支原体在全球范围内分布，主要感染鸡和火鸡；但鸭、鹅、珍珠鸡、鹦鹉、雉鸡和鹌鹑也可能易感。滑液囊支原体比鸡毒支原体对生长条件的要求更为苛刻，因此培养基中需要添加血清（最好是猪血清）和烟酰胺腺嘌呤二核苷酸 (NAD) 才能促进滑液囊支原体的生长。
滑液囊支原体分离株的毒力差异显著，疑似毒力因子包括黏附素、唾液酸酶、一氧化氮、细胞侵袭能力以及抗原变异和免疫逃逸。
家禽滑液囊支原体感染的流行病学与传播途径
滑液囊支原体可通过卵传播（经卵巢）。
养殖场间的水平传播主要通过人类活动（如鞋靴、设备等污染物）或急性/慢性感染带菌禽类的移动实现。
一旦滑液囊支原体通过垂直或水平传播进入鸡群，其临床症状可能潜伏数日至数月。然而当禽类处于应激状态时，可通过气溶胶和呼吸道分泌物在禽群内快速发生个体间直接水平传播，随后疾病临床症状便会在禽群中扩散开来。
一旦个体（指单只动物）或禽群感染，它们将终生感染，成为滑液囊支原体的携带者或储存宿主。
由于美国针对鸡和火鸡育种场实施了国家家禽改良计划控制项目，美国商业家禽群中滑液囊支原体感染率已有所下降。然而，大规模疫情仍时有发生，波及种禽和商品禽群，通常局限于一个或少数几个州，且与某一特别具有毒力的分离株有关。
滑液囊支原体感染在多日龄蛋鸡群中较为普遍，可能导致产蛋量下降。
家禽感染滑液囊支原体的临床表现与病变特征
尽管感染滑液囊支原体呼吸道疾病的禽类可能出现轻微啰音，但通常不易观察到临床症状。然而，处于应激状态或伴有其他感染的禽类更易显现临床症状。
许多禽类感染滑膜炎的最初临床症状包括头部呈现淡蓝色、跛行，且有蹲伏倾向。病情较重的禽类精神萎靡，常被发现待在饲料槽和饮水器旁休息。跗关节和足垫出现肿胀，还可能出现胸骨滑液囊炎（胸部水疱）（参见）。
Swollen foot pad and swollen hock joint in chickens with infectious synovitis (M synoviae infection).
Swollen foot pad and swollen hock joint in chickens with infectious synovitis (M synoviae infection).
Courtesy of American Association of Avian Pathologists.
Swollen hock joint in a 14-week-old turkey tom with infectious synovitis caused by M synoviae.
Swollen hock joint in a 14-week-old turkey tom with infectious synovitis caused by M synoviae.
Courtesy of Dr. Mohamed El-Gazzar.
Swollen hock joint of turkey with M synoviae infection, showing viscous yellow exudate in the joint and around the tendons.
Swollen hock joint of turkey with M synoviae infection, showing viscous yellow exudate in the joint and around the tend
Courtesy of Dr. Mohamed El-Gazzar.
Swollen foot pad and swollen hock joint in chickens with infectious synovitis (M synoviae infection).
Swollen foot pad and swollen hock joint in chickens with infectious synovitis (M synoviae infection).
Courtesy of American Association of Avian Pathologists.
Swollen hock joint in a 14-week-old turkey tom with infectious synovitis caused by M synoviae.
Swollen hock joint in a 14-week-old turkey tom with infectious synovitis caused by M synoviae.
Courtesy of Dr. Mohamed El-Gazzar.
Swollen hock joint of turkey with M synoviae infection, showing viscous yellow exudate in the joint and around the tendons.
Swollen hock joint of turkey with M synoviae infection, showing viscous yellow exudate in the joint and around the tend
Courtesy of Dr. Mohamed El-Gazzar.
发病率通常为低至中等，死亡率介于 1% 至 10% 之间。
与鸡毒支原体类似，滑液囊支原体感染在火鸡中引发的临床症状更为显著，且多与关节病变相关。在传染性滑膜炎初期，多数滑膜结构会出现乳脂状至粘稠的黄灰色渗出物，但最常见于肿胀的跗关节和翅关节（参见火鸡及图示）。在慢性病例中，这种渗出物可能干涸凝结，病禽会虚弱消瘦，并因胸骨长期着地卧姿出现胸部水疱。对产蛋量的影响通常不明显，但曾有蛋鸡群出现短暂产蛋下降的案例。据报告，滑液囊支原体会导致蛋鸡出现蛋壳异常（壳薄透亮、顶端畸形），欧洲地区尤为多见。
当禽类因空气质量不佳而受到应激，或者感染新城疫或传染性支气管炎时，可能不会出现呼吸道病变，也可能出现轻微的黏液性气管炎或鼻窦炎，并伴有气囊炎。
家禽滑液囊支原体感染的诊断
实时 PCR 检测法
诊断滑液囊支原体感染，首先需排除骨骼异常和外伤这两种跛行的可能病因。
鉴别诊断包括病毒性腱鞘炎、葡萄球菌及其他继发性细菌性关节感染，以及其他呼吸道病原体感染，如新城疫病毒、传染性支气管炎病毒和鸡毒支原体。
基于临床症状和大体病变的初步诊断应通过实验室检测来确认。
采用血清平板凝集试验或 ELISA 法进行滑液囊支原体抗体检测；但可能与鸡毒支原体发生交叉反应，并出现其他非特异性反应。这些反应物需通过血凝抑制试验来确认为血清阳性或分离及鉴定支原体菌落。
PCR 检测可用于快速检测死亡前或死亡后样本或分离菌落中的滑液囊支原体 DNA。
对于火鸡而言，针对滑液囊支原体的凝集试验可能不可靠，尤其对于以呼吸道感染为主的禽类。
由于滑液囊支原体的苛养特性和分离培养困难，分子诊断检测已成为禽类支原体感染检测与分型的常规手段。实时 PCR 检测技术对滑液囊支原体具有高灵敏度和特异性，且检测速度快，可直接采用感染部位（如鼻后孔、窦腔、气管、气囊和关节）的临床拭子样本进行检测。通过靶向扩增特定基因片段的序列分型技术，可区分不同滑液囊支原体分离株及疫情暴发源，该方法在流行病学调查及感染源追溯方面具有重要应用价值。
家禽滑液囊支原体感染的治疗、控制与预防
种源应采自无滑液囊支原体的育种基地。
良好的生物安全措施有助于控制疾病。
饲料中添加抗菌剂可能有助于减少滑膜炎病例，但对已确诊的病例无效。
国家家禽改良计划针对滑液囊支原体实施的控制和血清学监测方案与鸡毒支原体的防控措施类似。这些方案已在美国大多数鸡和火鸡的原种鸡群中根除了滑液囊支原体感染。雏鸡和雏火鸡应从无滑液囊支原体的种禽场获取，并采用生物安全措施进行饲养，以防止该病菌传入。
饲料中添加抗菌药物可能有助于预防滑膜炎，但成本高昂且对已发病例效果不佳。当滑液囊支原体引发气囊炎被认为是一个潜在问题时，在禽类对新城疫和传染性支气管炎疫苗产生呼吸道反应期间进行预防性抗菌治疗可能会有帮助。
一种对温度敏感的活疫苗(MS-H) 已在多国上市，但尚未在美国获得商业销售许可。而滑液囊支原体灭活菌苗的供应正日益受限。
关键点
滑液囊支原体感染可通过垂直和水平两种途径传播。
一旦感染，个体和禽群将转为慢性带菌者（储存宿主）。
如果没有并发症，滑液囊支原体引发的临床症状通常较轻微，死亡率较低，产蛋量仅有小幅度下降；火鸡感染该病菌后病情更为严重，这种病症被称为传染性滑膜炎。
细菌分离、血清学检测和分子诊断检测是检测和鉴定滑液囊支原体的常用方法。
无滑液囊支原体的种禽群是预防（滑液囊支原体感染）的首选方法。
了解更多信息
Ferguson-Noel N, Noormohammadi AH.Mycoplasma synoviae.In:Swayne DE, ed. Boulianne M, Logue CM, McDougald LR, Nair V, Suarez DL, associate eds.Diseases of Poultry.14th ed. Wiley Blackwell; 2020:924-929.
Kempf I. Avian mycoplasmosis.In:Brugère-Picoux J, Vaillancourt J-P, Shivaprasad HL, Venne D, Bouzouaia M, eds.Manual of Poultry Diseases.Association francaise pour l’avancement des science; 2015:278-285.
